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柱層析(過柱子),一文從入門到精通!

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寫在前面

本文對之前的分享有所刪改,并增添了一些內容補充,本文較長,建議收藏相互印證,過柱子相關的大部分問題將在這里終結。以下為正文部分:

之前和師妹聊天,師妹傳了一個合成群內的聊天記錄,看到一個很有意思的問答,瞬間給笑慘了!


正好值研究生開學,有好幾個同學私信菜籽,讓出一期關于過柱子的方法技巧的分享。總結了許久,從歷史講下來,廢話比較多,三易其稿,不能說多好,大概就全流程走一遍吧,供大家參考。

大家有補充的也可以后臺私信分享,如果有必要,我們可以引用再做一期經驗分享。

菜籽已經在化學行業摸爬滾打十四五年了,之前在藥廠的時候一直覺得拿到一個化合物直接過柱子是一個很low的操作。

因為菜籽是工廠技術出身,所以拿到化合物的第一個想法就是能不能用結晶,打漿,減壓蒸餾,酸堿洗等方法來純化,如果不能的話還會考慮能不能轉化上個保護基啥的,在其他步驟去純化。

過柱純粹是個無奈之舉。

直到后來進到高校,做起來了毫克級別的反應,才發現是菜籽狹隘了,上述方法真的不適用,過柱子真的的很香。

而且目前在菜籽實驗室來講,過柱子的手段太多了,除了人力,還有過柱機,有循環制備型GPC,有高效液相制備,量少了偷個懶是完全可以的。


當然,像菜籽這樣“特權的”人并不多,“ 普通人 ”想要用,是要求他們把傳統柱子過好才可以預約的。


我們常說過柱子其實就是柱層析分離,也叫柱色譜,1903年由俄國科學家首次發明使用,其把植物色素的溶液經過粉碎的碳酸鈣粉末,發現從上到下在碳酸鈣粉末上有不同的色帶,通過對不同色帶的分開提取,得到了較純葉綠素,葉黃素等。

該方法經過經過百年的發展至今已經比較成熟,固定相也從單一的碳酸鈣粉末發展到了氧化鋁(又分為酸性、中性、堿性),硅膠,活性炭等,其中各大實驗室最常用的便是硅膠,一般分為正相硅膠和反相硅膠!

固定相(硅膠)一般要經過純化和活性處理,顆粒大小應當均勻統一,理論上其顆粒越小、同單位質量表面積越大,吸附能力就越高,分離效果也就越好。但是實際使用中固定相的顆粒太小時往往會存在兩個情況:

  • 一個是其質更輕,容易飄散在空氣中(硅膠進入人體無法降解,越細越毒);

  • 二是顆粒小也會導致顆粒之間縫隙小,從而使溶劑的流速就太慢,耗時;以硅膠為例,目前已經商業化用量最大的硅膠尺寸為200-300目。

過柱手段這塊,除了前面說的正向循環制備,高效液相制備,過柱機這些自動分析的設備,手動過柱方面主要分為常壓過柱,減壓過柱,加壓過柱三種。其中:

  • 減壓過柱 ,因為洗脫劑流速過快,會損失大半部分塔板數,分離效果較差,適合分離TLC板子分的比較開的樣品,尤其適合產物只有一個大極性雜質的樣品;所有其大多數時間被用于化合物的預處理,過掉部分雜質后再仔細純化。 相關內容見:

  • 常壓過柱是三者中分離效果最好的一種過柱方式,但是因為很多時候溶劑走的太慢,分離效果再好也會影響效率,所以這時候一般會給與壓力,這就是所謂加壓過柱;

  • 加壓過柱壓力不宜過高,一般手動的用雙鏈球,自動的就用個養魚泵,兩者都可以如圖改裝一下。


前面的內容算一些介紹,下面將以正相柱層析為例子,我們講一下常規的上樣、過柱流程:

1,準備工作要做好

選取柱子時,觀察有無砂板,沒有砂板的柱子記得底部填一些棉花,棉花不宜太厚也不宜太薄,能擋住硅膠不下來就好。這里面涉及到一個比較爭議的問題,即甲醇過柱子會不會溶解硅膠?

菜籽個人的經驗是不會,一個解釋見:

配套的準備好最小極性的的洗脫劑,紫外燈(實驗室個人推薦手提式,隨時可以照一照),加壓設備,以及試管架!

2.選取合適的柱子,加入硅膠,浸潤硅膠,拍平

柱子的選取非常重要,大小應該根據產物的量來計算,一般可以分為:

  • 幾毫克的柱子(全合成最終的選擇);

  • 幾十毫克的柱子(方法學擴底物);

  • 500毫克到1克的柱子(方法學做原料);

  • 5~100g左右的柱子,

  • 以及更大規模。

實驗室最常見柱子直徑和高度比值一般在1:2.5到1:15之間,上樣時硅膠量是樣品量的20~40倍左右。

選取柱子的標準要實際根據你樣品的TLC爬板情況來,如果雜質很多挨得很近,那么盡可能選大一丟丟的柱子,使你的樣品正好能鋪一小薄層(建議厚度在5mm以下),如果雜質很遠,這個厚度自然也可以提高,但也不建議你樣品厚度超過2cm,除非這個產物就是簡單沖一沖就行。

很多人會犯一個錯誤,就是想著我硅膠多加點,加的高高的,我樣品上厚一點是不是也可以分離的很好?

這個答案是否定的!

理由是底下的樣品和上面的樣品不是在同一起跑線,這樣只能的到一部分純的,大部分是交叉的,過不純不說,浪費時間浪費溶劑!

這也是為什么樣品要求鋪薄的原因!

選取柱子后,加入硅膠時可以通過加料漏斗,同時一定要戴上口罩在通風櫥里操作,原因是硅膠吸入人體后無法代謝,會將你的肺部打成篩子。硅膠粉是最毒的粉末之一,矽肺病約占全國塵肺病的50%!

至于浸潤硅膠,推薦的的流程如下:

①先把裝好硅膠的硅膠柱豎直放好,硅膠表面用手拍平,

②硅膠柱底部連接水泵,把硅膠抽實,然后從上面倒入極性最小的洗脫劑,到洗脫劑剛要漏下時,關閉截止閥,防止溶劑抽到水泵。

③在加壓狀態,用最小的展開劑沖七八個柱體積就可以把硅膠浸潤地均一。


3、上樣

上樣分為濕法上樣和干法上樣。

濕法上樣,建議的做法是: 用膠頭吸管吸取樣品,靠近硅膠最上面切面,緩慢均勻滴加樣品,直到覆蓋一層,然后停止加樣,給點壓力讓油狀物沉浸到硅膠層里;油狀物沉浸到硅膠層里后重復這種操作多次,直至全部上完樣!

有些新同學可能好奇為什么這樣操作,而不是一次性把濕法上樣的油狀物一次性上完呢?

答案是這種操作可以減少樣品層的有效高度。 即使還沒有加洗脫劑,但當油狀物浸入硅膠的那一刻,柱層析就已經開始,后面的樣品相當于溶劑在推動前面的樣品在硅膠里吸附、解吸附。

至于干法上樣,除非萬不得已菜籽是不推薦的,固體樣品更推薦打漿或者結晶:

等等。

干法上樣一般會帶來兩個方面的問題;

①拌樣的過程中因為要升溫旋蒸,增加了樣品和硅膠之間反應的可能性;

②干法上樣就意味著樣品層里會引入吸附劑,增加了樣品層高度或柱子的尺寸,需要更多的時間,更多的溶劑。

如果不得已選擇了,拌產物的硅膠用量一般以1~2倍樣品量為宜。其上樣直接把吸附好的粉慢慢倒進柱子就好,一些要求和濕法類似。

4、加入無水硫酸鈉或石英砂

為了避免在加洗脫劑時撞擊到樣品層,使其不均勻,變形,影響分離效率,一般會在樣品層上面鋪一層無水硫酸鈉或者石英砂。

也有見到加棉花的,但是掏出來就有點費勁了。

菜籽個人喜歡鋪無水硫酸鈉,因為它還有干燥的功能,對于二氯甲烷這種易揮發吸熱產生冷凝水的溶劑比較友好!

至于高度多少,就看自己的手法了!


5,梯度洗脫,采樣收集

在上樣之后,菜籽個人喜歡先用小極性溶劑(基本不會讓產物下去的溶劑)沖柱2-3個柱體積,確保上下均一,然后選比例洗脫。

至于過柱子的洗脫劑怎么選?

“洗脫劑的比例是你產物TLC爬板爬到Rf值約0.2時的比例。”

這是菜籽看到很多書中以及很多博主分享的過柱經驗,實際過程中也大差不差,個人來講更喜歡縮小一倍梯度洗脫。

比如如果TLC爬板展開溶劑是PE/EA=2:1,菜籽更可能從PE/EA=4:1開始梯度洗脫,洗脫到PE/EA=2:1結束,一般效果更好。

還有收集洗脫液的時候也是有技巧的,可以先選大一點的試管接收,TLC快到目標點了就換成小一點的試管,這樣可以減少多接一點的可能性,不易包雜。


如果遇到雜質點和產物點挨得比較近的情況,特別是那些熒光又比較弱的,記得不要加壓,應選常壓過柱,每次接半管或更少就換管,也可以提高純化幾率。


6、柱子切忌不要及時處理!

很多新人有個習慣,過柱到了后期,TLC后面一兩管沒有產物,就默認柱子過完了,壓干處理掉。

等到一計算收率才發現收率偏低,或者去打譜發現譜圖不正確,抓錯點了,后悔莫及。

所以菜籽建議您過完想要的點后柱子不要急忙處理,打核磁做收率都匹配之后再處理。

如果忙,或者急著用這根柱子純化其他化合物,建議換大極性良性混合溶劑沖一下,把這部分洗脫液單獨留下來等鑒定結果。

實際上,個人過柱的那些年,在看似出完產物的時候,都會換大極性溶劑沖一沖。遇到過有些東西一開始不了解形狀,實際溶解性很差在柱子上斷斷續續出來,如用純EA確定沖不出來了,但一旦換成二氯甲烷:甲醇體系,還會有!

過柱可能會遇到的一些問題,列如下:

1、洗脫劑和展開劑概念

展開劑是指你TLC爬板時的溶劑比例,洗脫劑是指你過柱時用的溶劑,理論上洗脫劑的極性不應大于展開劑的極性。

但某些特殊不好溶解的產物,過柱后期洗脫劑的極性可能會大些,常用洗脫劑極性以下面順序遞增:

己烷和石油醚 <環己烷<甲苯<二氯甲烷<乙酸乙酯<丙酮<<甲醇<水<乙酸< pan>

至于國外喜歡用的氯仿和乙醚,不建議使用。

2、棉花怎么塞和怎么取的問題

對于沒有砂板的柱子,填棉花有一個小技巧:可以直接拆一個衣架,用其將棉花投進入旋塞上面的出液口


取棉花也有小技巧,在水龍頭上接個軟管,用水壓可以輕易沖出來。

3、柱前樣

過柱之前一定要留柱前樣,特別是比較雜的體系;同時我也建議你過柱前TLC分析時點濃一點,有些雜質太稀的體系看不到!

4、油狀物選擇干法上樣!?

不建議,不建議,不建議!

菜籽看到很多碩士研究生這樣操作,也看到過一些博士研究生這樣操作,當時是懵逼狀態,很不理解。

這得要多少的硅膠才能全部吸附住,本來固體只要1~2倍硅膠吸附,你這樣操作最起碼要十倍以上,也意味著相同柱子,柱效降低10倍以上,甚至遠遠不止!

如果你告訴我是因為產品固不固,液不液才這樣選擇,我會告訴你選方法重結晶試試!

5、用了一次的硅膠可以用大極性溶劑(如甲醇)沖柱處理一下再用嗎?

不建議再使用,塔板數會降低,柱效差,分離效果也差。

舉個最簡單易懂的例子,擦完屁屁的衛生紙,再用你都會疊成兩層,而且兩層的情況下都有可能

“噗”一下弄爛了。

粘一手!

6、硅膠和溶劑會反應嗎?

一般和過柱溶劑不反應,但要注意兩點:

一個是有些溶劑(如二氯甲烷、石油醚) 和硅膠混合的時候會明顯放熱,這也是為什么開始階段有時候試管會發燙的原因,對溫度敏感的化合物要小心;

另一個是甲醇會溶解不純硅膠里的無機鹽,不太建議用純甲醇這種太大極性過柱子!

7、洗脫劑選擇的問題。

洗脫劑一般要根據展開劑比例選,但有時候PE/EA體系TLC不好時,可以用PE/DCM 體系試一試,說不定有更好的效果!

8、grease峰問題

柱子下面的活塞記得一定不要涂硅脂之類的潤滑劑,相似相溶原理,會被淋洗劑帶到產品中從而導致雜峰;如果擔心漏液,建議采用四氟節門的旋塞。

9、干法上樣,樣品怎么準備!


吸附時,一定要旋成粉狀!

吸附時,一定要旋成粉狀!!

吸附時,一定要旋成粉狀!!!

重要的事情說三遍。如果沒有旋成粉狀,成疙瘩顆粒就上樣了,運氣好可能是過不純;運氣不好可能就如同上圖一樣產物在柱子前頭析出來,如果產品溶解性好也就罷了;如果溶解性特別不好,會導致整個柱子每個地方都有產品,即使用甲醇也一直沖不下來,到時候該怎么辦?

分次取出來用大量水洗滌,有機溶劑萃取嗎?

實話告訴你,菜籽這么干過!

效果很差,基本上廢了!

10、吸附強弱問題

硅膠對化合物的吸附性與化合物結構、官能團息息相關 ,一般含有極性較大的基團的化合物與硅膠吸附也越大,下面是根據個人經驗總結的大概排序,可以參考一下:

堿和酸>醇、胺、酰胺、硫醇、酚類>酯、醛、酮>硝基化合物>芳香族化合物>鹵代物、醚>烯>飽和烴

11、如果發現柱子過雜了或選擇的極性不對

不要勉強也不要猶豫,最正確的做法是:直接換大極性溶劑直接沖下來,重新過柱,以節省時間。

12、柱子有氣泡

無論正相柱還是反相柱,柱子內有氣泡肯定會影響分離效率的。具體處理方法;

一是用洗脫劑反復壓;

二是不加壓狀態下反復拍,氣泡密度影響會往上走。

三,用長的工具投一投,再壓

13、反相柱和正相柱異同

如果過一些極性比較大的化合物如鹽酸鹽、堿性鹽以及含有很多大極性基團的化合物,正相柱就不合適了,此時用到反向柱。


反相硅膠具體就不科普了,但過反相柱有幾點需要科普:

①有反向硅膠自然就有反相硅膠板,一般為鋁板,兩者價格都比較貴,所以要節省使用。

②反向柱體系可以類比HPLC,一般用甲醇-水體系,或乙腈-水體系過柱。過柱極性和正相柱相反,此體系中,甲醇大于水。

③反相柱不適用于全水體系,過完后反相硅膠要用甲醇沖洗干凈,不要壓干,用甲醇浸沒保存

④反相柱也可以干法過柱,但拌樣的的硅膠損壞比較厲害,內部空隙太大有缺陷,建議不要再回收。

14、酸加酸、堿加堿

兩個作用,一個是抑制拖尾;一個是防止分解,特別是堿性化合物如亞胺,由于硅膠是酸性的,一定要小心。


15、選擇合適的固定相

我們都知道用硅膠作固定相過柱子的原理其實是吸附與解吸的平衡。

所以如果樣品與硅膠的吸附比較強的話,就不容易流出,可能導致的后果就是,兩個產物點,極性大的卻更容易出來。

這種情況在有機合成中是經常遇到的。小編也遇到過多次,此時用氧化鋁做固定相可以完美解決!

16、過柱后的產物有些毛毛刺刺的

有些固體過柱后在溶液里TLC時點板是純的,但是旋干點濃一點就會顯現出雜質,相比較再過柱一遍,我更建議你打個漿,溶劑比例選擇比洗脫劑極性小一點。

17、酰氯能不能過柱子?

低級的酰氯肯定不適合,一定會分解;但是高級的固體酰氯還是比較穩定的,可以過柱子,但是我還是建議不要輕易接觸水,畢竟水滴石穿!

相關內容見:

18、硅膠柱能不能停下來過夜?

一般不建議過夜,一方面硅膠是酸性的,可能會導致產物變壞,另一方面,溶劑在硅膠里面是非靜止的的,在截止閥關閉后,無序運動會增大,可能導致產物的平面變得凌亂。

19、柱子一定不要干了!

柱子干了這事比較可怕,柱子干了意味著硅膠里混進了很多氣泡用來填充溶劑缺失的體積,直接導致塔板數降低,分離度降低!

以上,未完待續

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