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《自然》新突破:重新理解代謝活動!李旭航/張賀飛團隊解答代謝網絡兩大核心難題 | 獨家解讀

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▎藥明康德內容團隊編輯

如果說生命體是一座精密的城市,代謝網絡就是遍布城市的交通系統,大量代謝反應在基因表達、酶活性的協調指揮下有序流轉。而在這個復雜系統的背后,是兩個尚未解開的核心問題:

  • 代謝物在代謝通路中的通量,即代謝流(metabolic flux),是如何在代謝網絡內分布的?(形象地說,這座城市的“實時路況圖”是什么樣的?)

  • 代謝反應受到干擾時,代謝網絡如何通過轉錄調控代謝基因表達,從而維持代謝穩態?(或者說,當出現“交通堵塞”時,該系統又是如何疏導交通,恢復運行的? )

這兩個問題分別也被稱作代謝流態(metabolic wiring)和代謝轉錄重編程(metabolic transcriptional rewiring),其答案對于理解代謝調控至關重要。但受限于技術,此前科學家們只能在少數代謝基因或通路中管中窺豹,缺乏在個體及全局網絡層面的系統性研究。

在最新一期《自然》期刊中,馬薩諸塞大學醫學院Marian Walhout教授團隊發表了兩篇背靠背論文,提出了代謝網絡轉錄重編程的補償/抑制模型,并且在活體線蟲體內成功預測代謝流全網絡分布、揭示了全新的代謝流模式。Walhout教授實驗室李旭航博士、張賀飛博士為兩篇論文的共同第一作者 (排名不分先后)。

全新技術平臺研究代謝調控

近年來,隨著CRISPR技術的發展,科學家能夠對哺乳動物細胞進行基因干擾/敲除,并且這種干擾與單細胞RNA測序相結合,用于檢測突變對基因表達的影響。但這種方法目前有兩個局限性:(1)單細胞測序的基因檢測靈敏度較低且價格昂貴;(2)難以在動物體內大規模應用。

與現有技術相互補,Walhout教授團隊在最新研究中開發了一種名為Worm Perturb-Seq(簡稱WPS)的新一代功能基因組學方法,實現了動物模型(秀麗隱桿線蟲)中的大規模并行基因敲低與bulk RNA測序,能夠高靈敏度地檢測基因干擾對轉錄組的影響。 介紹WPS技術的相應文章正在同行評審的最后階段,并已公布在了BioRxiv平臺(附帶詳細Protocol)1。

李旭航博士和張賀飛博士向學術經緯團隊介紹,WPS技術在為現有技術的缺點提供互補的同時,也發展了自身獨特的創新:“首先,它實現了以bulk RNA-seq作為讀出,提供了極高的數據質量,如基因檢測靈敏度。同時,這一技術實現了低成本的、全動物體內的擾動和測序,比常規方法便宜一個數量級以上。此外,WPS也創新了大規模bulk RNA-seq數據分析的算法平臺——EmpirDE算法。”

WPS技術為系統性研究代謝調控提供了理想的技術平臺,能夠進行系統性的RNA干擾,逐一抑制線蟲代謝網絡中約900個基因的表達(覆蓋了95%的代謝反應);同時在全動物水平進行RNA測序,從而系統性分析RNA干擾后的基因表達變化。

補償/抑制模型:從全局理解代謝穩態調控


整合這些數據后,研究團隊在第一篇論文中構建了一個代謝基因調控網絡(mGRN)。在該網絡中,385處擾動通過超過11萬個相互作用,與9414個差異表達基因相連。mGRN網絡呈現高度模塊化,22個擾動簇與44個基因表達程序連接,揭示了代謝通路間的協同調控。


▲基因組尺度全動物的線蟲代謝基因調控網絡。其中圖a為代謝轉錄重編程的模式。(圖片來源:原始論文[1])

接下來,研究團隊利用WPS數據整合代謝網絡模型和通量平衡分析,進一步提出了 代謝轉錄重編程的補償/抑制(Compensation/Repression , CR)模型

根據CR模型,當代謝網絡受到擾動時,生物體通過轉錄調控同時實現補償和抑制:一方面是激活具有相同核心代謝功能的基因,從而彌補擾動帶來的功能損失;同時,與擾動功能無關的其他代謝功能基因則是受到抑制,以減少能量消耗,維持代謝穩態。

CR模型解釋了代謝基因中的大多數轉錄反應,揭示了能量代謝、脂質合成、蛋白質合成、核酸合成、胞外基質合成這5項核心代謝功能的補償和抑制機制。以脂質合成為例,敲低脂質合成相關基因會激活其他脂質合成基因,以維持脂質合成的整體功能;同時,脂質合成擾動還抑制了能量代謝相關基因,將資源重新分配到脂質合成中。

在研究的最后,作者在人類細胞實驗中初步驗證,這個源自線蟲的CR模型也可解釋人類細胞的轉錄代謝重編程。由此,該研究為從系統層面理解代謝及其調節提供了全新的框架,大幅擴展了此前基于單細胞生物的觀察結果。研究論文指出,未來的研究計劃將WPS與更直接的組織水平分析相結合,以進一步研究不同組織和單個細胞中的代謝。

研究團隊指出,補償/抑制模型的發現解答了困擾領域近十年的疑問:如何理解組學數據中常常觀測到的錯綜復雜的轉錄重編程變化?“由于這些變化往往與被擾動的基因并不直接相關,因此一種觀點認為大部分轉錄重編程都缺乏實際功能。我們通過系統性數據和比對分析,終于找到了這一問題的初步答案——這些變化并非毫無意義,而是需要在全局網絡上理解它們與擾動的直接聯系,即對核心代謝功能補償和抑制。所以,這一模型為從系統層面上理解代謝穩態調控提供了全新的理論基礎,或許未來能夠更好地幫助我們理解代謝疾病發生和干預。” 李旭航博士和張賀飛博士介紹道。

代謝流新模式:重新理解代謝可塑性


在第一項研究建立了代謝基因調控網絡,并且利用該網絡提出了代謝轉錄重編程的補償/抑制模型之后,研究團隊在同期發表的另一篇論文中,將轉錄組數據的分子表型整合至代謝網絡模型中,系統性地準確預測了正常線蟲體內的代謝流分布,并且找到了多個不同于傳統認知的代謝流模式。

代謝流是生物體代謝狀態的核心指標之一,此前人們難以在多細胞生物中測定整個代謝網絡的通量。現在,隨著線蟲代謝網絡模型和WPS技術的出現,代謝流的研究出現了契機。


▲線蟲系統層面的代謝流特征(圖片來源:原始論文[2])

在最新研究中,研究團隊展示了一種從線蟲的轉錄表型中推測整個動物代謝流的策略。研究團隊使用包含了大約900個代謝基因的大規模WPS數據集,表明代謝基因擾動轉錄組的分子表型可以與代謝網絡模型整合,從而半定量地推測出線蟲的代謝流分布。

從推測結果中,研究團隊進一步發現了一系列不同于以往認知的代謝流特征,包括:以戊糖磷酸途徑的循環通量為主的中心碳代謝、缺乏嘌呤從頭合成通量、蛋白質和細菌RNA作為三羧酸循環的主要碳源。

以戊糖磷酸途徑的循環通量為例,研究提出線蟲通過戊糖磷酸循環消耗細菌RNA中的核糖,而不是傳統認知中的葡萄糖,用于生成NADPH、支持脂質合成。同樣,線蟲三羧酸循環的主要碳源也不是葡萄糖,相反它們以細菌為食,將食物中的蛋白質和RNA用作主要碳源。值得一提的是,這些推測都通過穩定同位素示蹤實驗得到了證實。

在線蟲中發現的這些非經典代謝流模式,極大地擴展了我們對代謝可塑性的認知。李旭航博士和張賀飛博士以RNA為例解釋道:“RNA是基因表達相關的生物大分子,在此之前從未被認為過可以作為代謝的基本‘原材料’(即碳源)。然而,線蟲中的發現更新了我們的基本認知,這也對其他系統中的研究產生了極大的啟示:人類等高等生物的食物中也富含大量的RNA, 這些RNA也會是代謝活動碳源的一種嗎?”

另一個案例是,戊糖磷酸途徑的循環通量可以產生大量還原力(NADPH),而不久前的研究發現這一過程也在免疫細胞氧化應激時有著重要功能,這是否意味著類似的非經典代謝流態也在正常組織和生理過程中廣泛存在?在該研究的啟發下,未來或將有更多意想不到的代謝流模式得以發現。

研究團隊指出,這項研究中關于線蟲代謝流態的一系列發現重新定義了線蟲代謝活動的基礎理論框架,對未來以線蟲為模式動物的生物學研究具有廣泛而深遠的影響。這些獨特的代謝特征為我們思考如何更好地利用線蟲模型進行基礎和疾病研究提供了全新視角。更重要的是,研究建立了解析全局網絡中代謝流態的新范式,證明了代謝流態具有極強的可塑性。這一發現為通過調節代謝流態來治療疾病有重要理論指導意義。

封面圖來源:123RF

參考資料:

[1] Zhang, H. et al. Worm Perturb-Seq: massively parallel whole-animal RNAi and RNA-seq. bioRxiv (2025). https://doi.org/10.1101/2025.02.02.636107

原始論文:

[1] X.H. Li et al., Systems-level design principles of metabolic rewiring in an animal. Nature (2025). DOI: 10.1038/s41586-025-08636-5

[2] H.F. Zhang et al., A systems-level, semi-quantitative landscape of metabolic flux in C. elegans. Nature (2025). DOI: 10.1038/s41586-025-08635-6

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