生信部分
一 、 數據獲取與預處理
數據下載:從TCGA數據庫下載 特定癌腫 的轉錄組數據(RNA-seq)和臨床數據。
數據清洗:去除低質量樣本和批次效應。標準化處理(如TPM、FPKM)。處理缺失值和異常值。
二 、 樣本分組
基于臨床特征分組:分期(如I、II、III、IV期)。組織類型(如腺癌、鱗癌)。生存狀態(生存組 vs. 死亡組)。
基于分子特征分組:基因表達聚類分析(如K-means、層次聚類)。分子亞型(如TCGA分子分型)。
三 、 差異分析
差異基因(DEGs)識別: 先將EnsembleID轉換成genesymbol,再 用 DESeq2 進行差異分析。一般設置顯著性閾值(如p-value < 0.05,|log2FC| > 1)。
可視化:火山圖展示差異表達基因。
四 、 功能富集分析
GO和KEGG通路分析:使用DAVID、clusterProfiler等工具進行功能注釋和通路分析。
GSEA(基因集富集分析):分析基因集在表型間的富集情況。
五 、 生存分析
Kaplan-Meier生存分析:分析差異表達基因與患者生存時間的關系。
Cox比例風險模型:多因素Cox回歸分析,識別獨立預后因素。
六 、 構建預后模型
特征選擇:使用LASSO回歸篩選關鍵基因。
預后模型構建:基于關鍵基因構建預后風險評分模型。
模型驗證:使用訓練集和驗證集進行模型驗證,評估模型的預測性能(如ROC曲線)。
七 、 免疫浸潤分析
免疫細胞浸潤估計:使用CIBERSORT、TIMER等評估腫瘤微環境中的免疫細胞組成。
免疫相關基因分析:分析免疫相關基因的表達與患者預后的關系。
免疫檢查點分析:研究PD-1、CTLA-4等免疫檢查點基因的表達。
八 、 藥敏分析
藥物敏感性預測:使用GDSC、CTRP等數據庫預測潛在敏感藥物。
藥物靶點分析:識別差異表達基因中的潛在藥物靶點。
藥物-基因網絡構建:構建藥物與基因的相互作用網絡。
九 、 多組學整合分析
基因組學:分析關鍵基因的突變、拷貝數變異(CNV)及其與 特定癌腫 發生的關系。
轉錄組學:研究關鍵基因對全基因組表達譜的影響。
表觀 組學:分析關鍵基因的DNA甲基化、組蛋白修飾狀態。
蛋白組學:通過質譜分析研究關鍵基因對蛋白質表達和修飾的影響。
十 、 網絡分析
基因共表達網絡:使用WGCNA構建基因共表達網絡,識別關鍵模塊。
蛋白-蛋白相互作用網絡(PPI):使用STRING數據庫構建PPI網絡,識別樞紐基因。
實驗部分
篩選出關鍵基因后, 濕 實驗可從多個角度深入驗證這些基因的功能、機制及其臨床意義。
一、 功能驗證實驗
功能驗證實驗旨在確認關鍵基因在 特定癌腫 發生、發展中的具體作用。
體外實驗(In Vitro)
① 基因表達調控
過表達:構建過表達載體,轉染 特定癌腫 細胞系,觀察基因過表達對細胞表型的影響。
敲低/敲除:使用siRNA、shRNA或CRISPR-Cas9技術敲低或敲除關鍵基因,觀察表型。
② 細胞表型分析 ( 腫瘤細胞 )
增殖實驗:通過CCK-8、MTT或EdU實驗檢測細胞增殖能力。
遷移和侵襲實驗:通過Transwell或劃痕實驗檢測細胞遷移和侵襲能力。
凋亡實驗:通過Annexin V/PI染色或Caspase活性檢測細胞凋亡。
細胞周期實驗:通過流式細胞術分析細胞周期分布。
③ 分子機制研究
信號通路分析:通過Western Blot、qPCR等技術檢測關鍵基因對下游信號通路(如PI3K/AKT、MAPK、Wnt/β-catenin等)的影響。
互作蛋白篩選:通過Co-IP(免疫共沉淀)或質譜分析篩選與關鍵基因相互作用的蛋白。
體內實驗(In Vivo) ≈ 動物模型
① 異種移植瘤模型 :將過表達或敲低關鍵基因的 特定癌腫 細胞接種到裸鼠或免疫缺陷小鼠中,觀察腫瘤生長、轉移和血管生成情況。
② 基因編輯小鼠模型 :構建條件性敲除或過表達關鍵基因的小鼠模型,研究其在 特定癌腫 發生中的作用。
臨床樣本(Ex Vivo)
組織學分析 ( 病理分析 )
通過免疫組化(IHC)檢測腫瘤組織中關鍵基因的表達及其與臨床特征的關系。
二、深度機制研究
深入研究關鍵基因在 特定癌腫 中的分子機制,揭示其調控網絡。
① 轉錄調控 :通過ChIP-seq或ChIP-qPCR分析關鍵基因的轉錄因子結合位點。研究關鍵基因是否受表觀遺傳調控(如DNA甲基化、組蛋白修飾)。
② 非編碼RNA調控 :研究關鍵基因 的啟動子區 是否受miRNA、lncRNA或circRNA調控。通過雙熒光素酶報告基因實驗驗證非編碼RNA與關鍵基因的相互作用。
③ 代謝調控 :研究關鍵基因是否影響 特定癌腫 細胞的代謝(如糖代謝、氨基酸代謝)。
④ 免疫調控 :研究關鍵基因是否影響腫瘤微環境中的免疫細胞浸潤。
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